傳代方法

使用前請先在緩沖液GD和漂洗液PW中加入無水乙醇，加入體積請參照瓶上的標簽； 1.取細菌培養(yǎng)液1-5ml，10,000rpm(11,500×g)離心1min，盡量吸凈上清； 2.向菌體沉淀中加入200μL緩沖液GA，振蕩至菌體徹di懸浮。注意：對于較難破壁的革蘭氏陽性菌，可略過第2步驟，加入溶菌酶溶液進行破壁處理，具體方法為：加入110μL緩沖液（20mM Tris,pH8.0；2mM Na2-EDTA；1.2%Triton），和70μL溶菌酶溶液（50mg/mL，客戶自備，目錄號：RT401），37℃處理30min以上。如果需要去除RNA，可加入4μL RNase A（100mg/mL）溶液（客戶自備，目錄號：RT405-12），振蕩15sec，室溫放置5min； 3.向管中加入20μL Proteinase K溶液，混勻； 4.加入220μL緩沖液GB，振蕩15sec，70℃放置10min，溶液應(yīng)變清亮，簡短離心以去除管蓋內(nèi)壁的水珠。注意：加入緩沖液GB時可能會產(chǎn)生白色沉淀，一般70℃放置時會消失，不會影響后續(xù)實驗。如溶液未變清亮，說明細胞裂解不徹di，可能導(dǎo)致提取DNA量少和提取出的DNA不純； 5.加220μL無水乙醇，充分振蕩混勻15sec，此時可能會出現(xiàn)絮狀沉淀，簡短離心以去除管蓋內(nèi)壁的水珠； 6.將上一步所得溶液和絮狀沉淀都加入一個吸附柱CB3中（吸附柱放入收集管中），12,000rpm(13,400×g)離心30sec，倒掉廢液，將吸附柱CB3放入收集管中； 7.向吸附柱CB3中加入500μL緩沖液GD（使用前請先檢查是否已加入無水乙醇），12,000rpm(13,400×g)離心30sec，倒掉廢液，將吸附柱CB3放入收集管中； 8.向吸附柱CB3中加入600μL漂洗液PW（使用前請先檢查是否已加入無水乙醇），12,000rpm(13,400×g)離心30sec，倒掉廢液，吸附柱CB3放入收集管中； 9.重復(fù)操作步驟8； 10.將吸附柱CB3放回收集管中，12,000rpm(13,400×g)離心2min，倒掉廢液。將吸附柱CB3置于室溫放置數(shù)分鐘，以徹di晾干吸附材料中殘余的漂洗液。注意：這一步的目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除，漂洗液中乙醇的殘留會影響后續(xù)的酶反應(yīng)（酶切、PCR等）實驗； 11.將吸附柱CB3轉(zhuǎn)入一個干凈的離心管中，向吸附膜的中間部位懸空滴加50-200μL洗脫緩沖液TE，室溫放置2-5min，12,000rpm(13,400×g)離心2min，將溶液收集到離心管中。注意：洗脫緩沖液體積不應(yīng)少于50μL，體積過小影響回收效率。洗脫液的pH值對于洗脫效率有很大影響。若用ddH2O做洗脫液應(yīng)保證其pH值在7.0-8.5范圍內(nèi)，pH值低于7.0會降低洗脫效率；且DNA產(chǎn)物應(yīng)保存在-20℃，以防DNA降解。為增加基因組DNA的得率，可將離心得到的溶液再加入吸附柱CB3中，室溫放置2min，12,000rpm(13,400×g)離心2min；

生長條件

37℃；18-24h；好氧；

存儲條件

2-8℃